黄芪为豆科植物膜荚黄芪[Astragalus men bra．naceus(Fisch)Bge]和内蒙古黄芪[A．mongho licusBge]的干燥根，其味甘、性温，人肺、归脾经。有补气升阳、固表止汗、托毒排脓、利水消肿和生肌等功效，为补气之要药。现代医学发现其药理作用广泛，近年来研究发现黄芪中含多糖、皂苷、黄酮、氨基酸等多种有效成分，这些活性成分均有促进抗体生成和免疫反应的作用，能增强机体免疫功能，增强细胞代谢，调节DNA复制及RNA和蛋白质的合成，并具有固肾降压、保肝抗炎等功能[1]。黄芪多糖(astragalus potysacchatides，APS)是黄芪的主要活性成分之一，可作为免疫促进剂或调节剂，同时具有抗病毒、抗肿瘤、抗衰老、抗辐射、抗应激、抗氧化等作用，临床上已经用于治疗肝炎、肿瘤等疾病[2]。
免疫细胞包括固有免疫的组成细胞和适应性免疫应答细胞(T细胞、B细胞)，其中固有免疫的组成细胞包括吞噬细胞、树突状细胞(dendritic cell，DC)、自然杀伤(natural killer，NK)细胞、NKT细胞、嗜酸粒细胞和嗜碱粒细胞等。黄芪多糖能显著提高机体的细胞免疫作用。在免疫细胞中，受抗原刺激后能分化增殖，发生特异性免疫应答，产生抗体或淋巴因子的细胞为免疫活性细胞(主要是T细胞和B细胞)，而单核细胞系的细胞和粒细胞则主要起协同作用[3]。
1 对T细胞和B细胞的影响
国内外学者认为多糖作为药用主要是提高细胞免疫作用。聂小华等[4]报道，无论体内外，黄芪多糖均可降低脾脏T细胞对伴刀豆球蛋白和植物血凝素的应答反应，其作用随浓度增大而加强，这说明黄芪多糖对T细胞的功能有抑制作用。黄芪多糖对小鼠体内淋巴细胞转化率有明显促进作用，但对植物血凝素诱导的体外淋巴细胞转化无明显影响，说明黄芪多糖必须经过体内的外代谢环节才能参与淋巴细胞的分化与成熟，这与黄芪多糖对B细胞的功能增强作用的观点相一致。黄芪多糖对于刀豆蛋白A诱导的脾脏、胸腺T淋巴细胞增殖具有显著促进作用。毛小娟等[5]从黄芪中提取得到的红芪多糖和黄芪多糖均可明显对抗泼尼松龙抑制血清凝集素、溶血素抗体的产生；可提高正常小鼠的酸性α仪萘酚醋酸酯酶阳性淋巴细胞比率及植物血凝素诱导的体内淋巴细胞转化率，并能完全纠正环磷酰胺及泼尼松龙的免疫抑制作用，说明两药对T淋巴细咆介导的细胞免疫功能不仅有增强作用，而且还有较强的调节作用。
2 对自然杀伤细胞细胞的影响
自然杀伤细胞(NK)细胞是一类重要的免疫调节细胞，也是目前已被公认的免疫监视细胞中最理想的效应细胞，其对B细胞、T细胞、骨髓干细胞等的功能均有调节作用。张晓明等[6]指出黄芪多糖可增强NK细胞活性，刺激NK细胞增殖，协同白细胞介素(interleukin，IL)2，使NK细胞活性和刺激NK细胞增殖的作用明显高于IL-2的单一作用，而不是两者效果的简单相加。
3 对腹腔巨噬细胞的影响
巨噬细胞是一种非特异性免疫细胞，它能吞噬和消灭外来异物和自身死亡细胞，在杀灭和清除抗原的过程中起着重要作用。黄芪多糖不仅能显著促进小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能，还能完全对抗泼尼松龙对吞噬功能的抑制作用。黄芪多糖对巨噬细胞的激活作用表现在增加巨噬细胞的数量，促进腹腔巨噬细胞分泌肿瘤坏死因子α，增强巨噬细胞的吞噬功能[7] 。王庭欣等[8] 对小鼠黄芪多糖灌胃15 d后，检测吞噬率和吞噬指数，与其对照组比较均有显著性差异，表明黄芪多糖能明显提高巨噬细胞吞噬鸡细胞的吞噬率和吞噬指数。曹丽萍等[9] 采用香菇多糖和黄芪多糖作用鲤头肾巨噬细胞24 h后，两种多糖均能显著增强IL一1 B的体外诱导表达，作用96 h后黄芪多糖能显著诱导巨噬细胞的氧爆发活性，表明黄芪多糖能增强巨噬细胞的吞噬功能。
4 对树突状细胞的影响
树突状细胞（DC）是目前已知的功能最强的专职抗原呈递细胞，它能显著刺激初始T细胞的增生。CD1a是未成熟DC的标志，随着树突状细胞的成熟，CD1a的表达逐渐降低；CD83是成熟树突状细胞的特异性标志；CD80 CD86是树突状细胞表面重要的共刺激分子，在树突状细胞发挥功能过程中起重要作用。黄芪多糖能刺激DC的成熟和促进其功能。邵鹏等[10]通过体外试验证明黄芪多糖能够提高DC表面分子CD11C和人类主要组织相容性复合体(major hist0c0mpatibility complex，MHC)Ⅱ的表达，并且呈黄芪多糖浓度依赖性；黄芪多糖能够促进DCIL一12的表达。电镜观察DC的超微结构，可见黄芪多糖处理组DC突起增多，形态上更加成熟。实验结果证实，黄芪多糖能促进小鼠骨髓来源的DC表型及功能的成熟。雷美清等[11]分离急性髓细胞白血病完全缓解期患者骨髓单个核细胞，采用含有重组人粒细胞巨噬细胞集落刺激因子和重组人IL-24的RPMI1640，完全培养基培养在37℃5％ CO 细胞培养箱中培养至第7天。阳性对照组加常规量的脂多糖，实验组用黄芪多糖 50、100、200 g／L刺激DC，阴性对照组加相同在透射电镜下观察Dex的形态，流式细胞仪检测Dex表面分子人白细胞抗原DR、CD80 CD86。 的表达，并对DC进行形态学和表面分子鉴定 ，结果发现中剂量黄芪多糖组中Dex表面分子(CD80 、CD 86、人类白细胞抗原DR)表达量较其他各组显著增高。表明黄芪多糖可以增加急性髓细胞白血病患者骨髓单个核细胞来源的DC诱生的Dex表面分子的表达量。刘立民等[12] 报道黄芪多糖可显著提高pDC分泌的干扰素仅、肿瘤坏死因子12~、IL-6的含量，促进pDC向DC的分化和成熟。
参考文献
[1] 胡庭俊，梁纪兰，程富胜，等．APS对小鼠脾淋巴细胞蛋白激酶C活性的影响[J]．中兽医医药杂志，2003，(2)：11．12．
[2] 隆雪明，刘湘新，文利新，等．黄芪多糖及其应用[J]．中兽医医药杂志，2007，(2)：24-04．
[3] 侯海锋，李茜，史万玉，等．黄芪多糖的免疫调节作用及其在兽医临床上的应用[J]．黑龙江畜牧兽医，2008，(4)：19-20．
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[5] 毛小娟，王军志，王凤连，等．红茂多糖和黄茂多糖的免疫调节作用[J]．中国药理学通报，1989，5(6)：367-371．
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[7] 许杜娟，陈敏珠．黄芪多糖对小鼠免疫功能的影响[J]．安徽医药，2003，7(6)：418-419．
[8] 王庭欣，王庭祥，吴广臣，等．黄芪多糖增强小鼠免疫功能的实验研究[J]．时珍国医国药，2009，20(7)：1763．1764．
[9] 曹丽萍，丁炜东，张柳，等．香菇多糖和黄芪多糖对鲤免疫细胞的活性和IL-1p体外诱生表达的影响[J]．水产学报，2008，32(4)：628~35．
[10] 邵鹏，赵鲁杭．黄芪多糖对树突状细胞表型及功能成熟的影响[J]．中华微生物学和免疫学杂志，2006，26(7)：637-640．
[11] 雷美清，张连生，柴哗，等．黄芪多糖对自血病患者树突状细胞来源的外泌体促成熟作用的研究[J]．1临床荟萃，2009，24(12)：1029—1032．
